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Unformatted text preview: 6. METODOS 6.1 Extracción de la antocianina La extracción de antocianina es comúnmente realizada por una repetida maceración o molido con pequeñas cantidades de HCl (0.1%-1.0%) en metanol o etanol a temperatura ambiente o en casos complejos en frío usando ácidos débiles (para evitar la degradación del pigmento). La adición de agua (10%-15%) en algunos casos permite una extracción completa dependiendo de la planta (Strack y Wray, 1989). La extracción del pigmento de rábano se realizó modificando la metodología descrita por Guisti y Wrolstad (1996) mostrada en la Fig. 6. 6.2 Purificación de la antocianina La purificación es un paso muy importante, debido a que en la extracción se arrastran contaminantes los cuales pueden afectar la estabilidad o el análisis del pigmento. En la purificación de antocianinas se usa una fase sólida para la extracción (PVPP y C18), que permite remover un gran cantidad de compuestos interferentes (azúcares, ácidos). Para la purificación se uso los siguientes materiales: Metanol acidificado 0.01% Agua acidificada 0.01% Polivinil poli pirrolidona (PVPP) Cartucho C18 (Sep-Pak Cartidge, 360 mg) Embudo de vacío Papel Whatman # 1 Bombas al vacío Matraz Erlenmeyer para vacío Pipetas * La succión al vacío se hace para agilizar el paso de los solventes a través del papel filtro En las Figs. 7 y 8 se muestra el procedimiento. Lavado del rábano Pelado de rábano, utilizando un pelador o cuchillo La cáscara se sumerge en metanol acidificado al 0.01% (v/v) Dejar 1 día en el refrigerador Filtrar el metanol en el papel filtro Whatman No. 1 Evaporar el metanol en un rota vapor a 39º C Obtención de la antocianina concentrada Figura 6. Extracción de la antocianina de la cutícula de rábano. Primer paso Poner en el embudo el papel filtro Whatman #1 y encima el PVPP en polvo (0.5 cm de espesor) Empapar el PVPP con agua acidificada (revolver), succión al vacío Empapar el PVPP con alcohol acidificado (revolver), succión al vacío Empapar el PVPP con agua acidificada, poner 15-30 mL de pigmento (revolver), succión al vacío (un matraz) Repetir varias veces Empapar el PVPP con alcohol acidificado, succión al vacío (un matraz) Reunir 150 mL de alcohol acidificado con el pigmento Utilizar rotavapor Buchi a 39º C Obtención de antocianina purificada Figura 7. Primer paso de purificación utilizando polivinil poli pirrolidona (PVPP). Segundo paso: Acondicionar el Cartucho C18 5 mL de agua acidificada, succión al vacío 5 mL de alcohol acidificado, succión al vacío 5 mL de agua acidificada, succión al vacío (matraz) 5 mL de pigmento, succión al vacío Repetir varias veces 5 mL de alcohol acidificado, succión al vacío (matraz) Reunir 150 mL de alcohol acidificado con el pigmento Utilizar rotavapor Buchi a 39º C Obtención de antocianina purificada. Almacenar a 4º C hasta las pruebas Figura 8. Segundo paso de purificación de la antocianina usando el cartucho C18 6.3 DETERMINACION DE LA CONCENTRACION Para la obtención de la concentración de la antocianina se utiliza el método de pH diferencial. La antocianina experimenta una transformación reversible con los cambios de pH manifestado por un llamativo cambio en la absorbancia. La forma oxonium predomina a pH 1 y el hemiacetal a pH 4.5. El pH diferencial es un método basado en esta reacción, y permite una rápida y exacta medida de la antocianina total, incluso en la presencia de pigmentos degradados polimerizados y de otros compuestos interferentes. Este método fue utilizado primero por Fuleki y Francis (1968) para medir el contenido de antocianina en arándano. Materiales Buffer pH1 (0.025 M Cloruro de Potasio) Buffer pH4.5 (0.4 M Acetato de Sodio) Celdas de cuarzo para UV- Visible Agua destilada Espectrómetro de UV-Visible Pigmento Pipeta El método se describe en la Figura 9. Para la obtención de la concentración de antocianina se utiliza la fórmula de pH diferencial: A= (Aλ vis-max – A λ700)pH1 – (Aλ vis-max – Aλ 700)pH 4.5 En donde A vis-max es la lectura del pico mas alto a pH 1 y pH 4.5, y Aλ 700 , es la lectura a 700 nm, tanto para pH 1 como pH 4.5 Para calcular la concentración en la muestra original se sigue la siguiente fórmula: Antocianina monomérica (mg L-1) = (A * Peso molecular * FD * 1000) / ( ε * 1) A = Es la absorbancia antes calculada FD = Es el factor de dilución ε = El coeficiente de extinción molar Calibrar el equipo, usando como blanco agua destilada. Se tomaron 300 µL del los sistemas modelo y 600 µL de Buffer pH 1 Se lee en el espectrofotómetro en el rango de 400nm-700nm. Tener una absorbancia menor a 0.8 UA (esto es para cumplir la ley de Beer) Se tomaron 300 µL del los sistemas modelo y 600 µL de Buffer pH 4.5 Se lee en el espectrofotómetro en el rango de 400nm-700nm. Se toma la lectura de los picos mas altos a pH 1 y pH 4.5, así como la toma de lectura a los 700nm. Figura 9. Obtención de la absorbancia de la antocianina, por el método pH diferencial. 6.4 PREPARACION DE LOS SISTEMAS PRIMERA FASE Una vez obtenida la concentración de la antocianina presente utilizando la formula de pH diferencial y la formula de antocianina monomérica, se procede a preparar los 6 sistemas. La concentración del pigmento presente fue 2.4 x 10-5 M. La concentración de los copigmentos utilizados fue 100 veces más concentrada, 2.4 x 10-3 M, por lo que se agregaron 0.6 mL de cada copigmento a 60 mL de pigmento en buffer pH 3 de citrato-fosfato sin sacarosa. La relación pigmento-copigmento para la primera fase fue 1:1. Se prepararan los sistemas de ácido vainíllico, ácido benzoico, ácido gálico, ácido cafeico y ácido ascórbico. Estos sistemas se mantuvieron en frascos de plástico a una temperatura de 50º C, pH 3 y ausencia de luz. 6.4.1 ANALISIS DE LOS SISTEMAS Los sistemas se evaluaron los días 0, 5, 7, 11, 13, 15 y 19. Para la evaluación se utilizó el colorímetro Gardner (System/05) con un aditamento de transmitancia, y una celda con un paso de luz de 0.21 cm se determinaban los valores triestímulo de Hunter (Lh, ah y bh). Estos valores sirven para poder obtener el Tono, Pureza, Diferencia Neta de Color y Luminosidad. Para calcular los parámetros antes mencionados se usaron las siguientes formulas: Tono = tan-1 (a/b) Pureza = (a2 + b2 )1/2 Diferencia neta de color = ((a - ao) + (b – bo) + (L– Lo))1/2 En la obtención de absorbancia se utilizó un espectrofotómetro Shimadzu UV 160. La absorbancia tomada en el espectrofotómetro sirve para obtener la concentración de los sistemas. Es muy importante la concentración, ya que indica si hubo cambios en los sistemas, por ejemplo, desplazamientos batocrómicos o desplazamientos hipercrómicos, ya que estos desplazamientos están relacionados con el efecto de la copigmentación. Lo que se quiere obtener son desplazamientos hipercrómicos (incremento en la absorbancia). 6.5 PREPARACION DE LOS SISTEMAS SEGUNDA FASE Se prepararon 8 Sistemas utilizando ácido vainíllico en diferentes proporciones antocianina:copigmento = 1:0.5, 1:1, 1:2. Los Sistemas se sometieron a una temperatura de 50º C , sin luz y a pH 3. 6.5.1 ANALISIS DE LOS SISTEMAS Los Sistemas se evaluaron los días 0, 3, 6, 9, 16, 21, 25. Cada Sistema se analizó utilizando un colorímetro para obtener los valores triestímulos de Hunter (Lh, ah y bh) en base a los cuales se calculó el Tono, la Pureza, la Diferencia Neta de Color y la Luminosidad. También se analizaron los espectros UV-Visible. Se utilizó el método de pH diferencial para determinar la concentración de la antocianina. En el Laboratorio de Investigación de Alimentos se llevó acabo, por parte de personal especializado, el análisis por HPLC de los Sistemas modelos. El equipo utilizado es un cromatógrafo de líquidos de alta presión (HPLC) Waters 600, con un detector de arreglo de diodos Waters 996, una bomba Waters 600, un desgasificador Metachem y una computadora Dell con el software Empower Pro, y una columna supercosil LC-18-DB, de 25 cm x 4.6 mm de Supelco. Las condiciones cromatográficas se indican en la Tabla1. * Antes de inyectar las muestras de los sistemas modelos se disolvieron en ácido fosfórico al 4% en una relación 1:2 y se pasaron por membranas filtradoras de 45 µm. 6.5.2 PREPARACION DE LOS SISTEMAS La concentración del pigmento presente fue 5 mM. La concentración de la vainillina fue 100 veces mayor (500 mM), por lo que se agregaron 0.7 mL del copigmento a 70 mL de solución con pigmento en un buffer pH 3 de citrato-fosfato con sacarosa y sorbato de potasio como conservador (13% (p/p) y 0.1% del peso total, respectivamente). La relación pigmento-copigmento fue 1:1, 1:2 y 1:0.5. Estos sistemas se mantuvieron en frascos de plástico a 50º C y ausencia de luz. Tabla 1. Gradiente utilizado para la separación de antocianinas y fenólicos por HPLC (Durst y Wrolstad, 2001). Tiempo % de ácido fosfórico a 4% % de acetonitrilo 0 94 6 10 94 6 55 80 20 65 80 20 75 94 6 ...
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This note was uploaded on 05/09/2010 for the course TEXTIL tex taught by Professor Textil during the Spring '10 term at Punjab Engineering College.

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