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Unformatted text preview: METODOLOGIA Extracción antocianinas Se utilizaron 236 gramos de hojas de col morada se sumergieron en una solución de 500 mL etanol acidificado con HCl al 0.01%, se homegeneizaron con una licuadora y permaneció en refrigeración durante una noche. Al día siguiente las cáscaras se removieron con un colador y la solución con el pigmento se filtró a través de un filtro Whatman No. 1 para eliminar sólidos suspendidos y precipitados. Las soluciones de etanol fueron concentradas en un rotavapor Buchi a no más de 35°C y los extractos se aforaron a 500 mL con agua destilada acidificada 0.01% HCl. Para la purificación del pigmento se colocó un embudo Buchner y dos filtros Whatman No.1 y posteriormente se colocó una capa de 1 cm de PVPP (polivinilpolipirrolodona, Sigma Chemical Co.) que es una resina selectiva para compuestos polares. Este aparato se conectó a un sistema de vacío, posteriormente se activó la resina con lavados subsecuentes con 20 mL de etanol acidificado y 20 mL de agua destilada acidificada 0.01% HCl. Se tomaron 60 mL de extracto y se hicieron pasar por la resina PVPP procurando no saturarla con el pigmento. Se removieron compuestos polares con lavados con agua destilada y finalmente se removieron s antocianinas con etanol acidificado. Después se diluyó el concentrado obtenido en 200 mL de agua acidificada y se activaron los cartuchos SepPak (C-18 / 360 mg ) con lavados subsecuentes de 6 mL de etanol acidificado 0.01% HCl y 6 mL de agua acidificada 0.01% HCl. Se aplicaron 3 mL de extracto a los cartuchos y se eluyeron con agua acidificada. Las antocianinas se eluyeron con 6 mL de etanol acidificado 0.01% HCl obteniendo así el extracto final que se almacenó en tarros de plástico y se mantuvieron bajo refrigeraron a 4 °C. Después de la purificación se llevó a cabo un análisis espectral UV-VIS para evaluar la calidad de los extractos. Se limitó el uso del rotavapor con el fin minimizar la oxidación por exposición al aire y calor (Fennema, 1976). En su lugar se utilizaron los cartuchos SepPak (C-18 / 360 mg ) con una técnica fácilmente reproducible. Cuando se observó 1 cm de color rojo en los cartuchos durante las elusiones acuosas en ese momento se eluyeron con 1 mL de etanol que es el volumen total del cartucho y esto es suficiente para arrastrar la mayor parte de la antocianinas ya concentradas y así estandarizar todos los extractos utilizados. Después se realizaron lavados consecutivos del cartucho en otro matraz con agua y etanol acidificados para eliminar el resto de los compuestos fenólicos. Esta técnica también facilitó la condición de mantener una dilución de 1mL con aproximadamente un 15% de búffer que mantiene el pH deseado (Worlstad, 2002). Una vez realizado esto se evaluaron nuevamente las antocianinas con UV-VIS para saber si todavía se encontraban en su forma monomérica. Para esto se comparó el patrón típico de el espectro de antocianinas en donde a pH 4.5 el pico predominante para cianidina 3-glucósido en 506nm ó cercano no debe aparecer. Si aparece significa que las antocianinas se encuentran en su forma polimerizada y no se degradan a pH básico (Giusti y Wrolstad, 2002). La cianidina 3-glucósido tiene un _ = 26, 900 cm-1/mol, una absorbancia característica entre 490-550nm y un peso molecular de 449.2 grs/mol (Giusti y Wrolstad 2002). Cálculo de concentración de antocianinas Existe un método cinético para el cálculo de la concentración de antocianinas por medio de espectroscopia UV-VIS (Giusti y Wrolstad 2002). [mg L-1] = ( A * MW * DF * 1000) / (ε * 1) Donde: A = Absorbancia; PM = Peso Molecular; FD = Factor de Dilución; ε = Coeficiente de Absorción Molar. Los datos acerca de las antocianinas que fueron utilizados fueron los siguientes: Fuente Antocianina Amax (nm) Ciruela Cyd-3-glu 510 Col Morada Cyd-3-sof-5-glu+p-coumárico 526 Rábano Pg-3-sof-5-glu+ferúlico 507 Abreviaturas: glu: glucósido. sof : soforósido (Giusti-Wrolstad, 2002) ε 26900 38020 29636 [ppm] 62.34 412.65 597.4 Metodología de la actividad antioxidante (AOP) para antocianinas La formación de dieno conjugado hidroperóxido de ácido linoleíco (DCHP) en un sistema de oxidación-reducción que contiene FeCl3/vitamina C, se produce por la presencia de Fe3+ que se reduce a Fe2+, con una transferencia de electrones del ácido ascórbico que se convierte en un pro-oxidante en forma de ácido dehidroascórbico. La presencia de antocianinas como antioxidantes debe reducir la concentración de DCHP. Para verificar esto se tomó como testigo un sistema sin antioxidante y otro con BHT (hidroxitolueno tertbutilado) que tiene un 100% de actividad antioxidante (AOP). Metodología de las pruebas con sistemas de estrés oxidativo: Emulsificación (dos soluciones pH 4.5 y 7.4): 100 mg ácido linoleico 1.0 g Tween 20 aforar a 20 mL con búfer respectivo Sonicar por 2 min Medir absorbancia DCHP a 234 nm Sistemas FeCl3/ascorbato 1.62 mg FeCL3 7.04 mg ácido ascórbico aforar a 200 mL con búfer (pH = 4.5) Colocar en hielo C Para cada búfer preparar: 0.5 mL emulsificado BHT (control) 0.5 mL sistema 0.1 mL 2000 ppm BHT en etanol (dos tubos) Con antocianinas Sin antioxidante Para cada búfer preparar: 4 alícuotas de 0.1 mL conteniendo 50 ppm, 25 ppm,100 ppm y 250 ppm de antocianina Agregar: 0.5 mL emulsificado 0.5 mL sistema (8 tubos) Para cada búfer preparar: 0.5 mL emulsificado 0.5 mL sistema 0.1 mL Etanol (dos tubos) Incubar a 37 ºC Espectros de DCHP a 234 nm a los 15 y 30 min. ...
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This note was uploaded on 05/09/2010 for the course MAIZ morado taught by Professor Antocianina during the Spring '10 term at Punjab Engineering College.

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